• cfDNA片段组学测序技术

    技术简介

    一、什么是cfDNA片段组学

     循环游离DNA(cfDNA)并非血液中随机降解的DNA碎片。由于cfDNA在体内释放时受到核小体的严密保护,其断裂过程并非随机,而是受到染色质开放状态、核小体结合情况以及内切酶切割偏好的精细调控。当细胞发生凋亡或坏死时,释放进入血液的cfDNA精确保留了来源细胞核内的染色质结构信息与表观遗传特征。

    cfDNA片段组学(cfDNA Fragmentomics)正是基于这一物理规律,通过对血液cfDNA进行深度的物理特征挖掘,解析染色质的开放与闭合状态,从而在基因序列变异(SNV)之外,提供更为宏观、直观的疾病分子全景。研究者们通过几项奠基性发现,系统化确立了片段组学的三大核心分析维度:

    片段长度分布(Size Distribution):正常造血细胞释放的cfDNA主峰在167bp左右(单核小体长度),而肿瘤细胞由于异常的坏死和凋亡机制,会释放大量更短的片段。

    末端碱基模式(End Motif):cfDNA断裂末端并非平齐,切割酶切位置具有特异性,不同组织来源的染色体片段末端偏好不同。特定的末端序列偏好与方向性特征能够反映组织来源,为片段组学增加了末端序列这一全新维度。

    核小体足迹(Nucleosome Footprinting):WGS测序在基因组上的覆盖度并非均匀,而是呈现约180bp的周期性波动。 这三大特征的发现,标志着cfDNA研究正式向片段组学这一独立方向演进。

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

    图1 cfDNA的生物学特征

     

    二、cfDNA片段组学的临床应用进展

    在奠基性发现之后,该领域迅速向临床应用转化。早期的高价值应用证明了单一cfDNA物理特征即具备强大的疾病识别能力:

    在片段长度的直接诊断应用方面,Underhill HR等人(Underhill et al., 2016)在《PLoS Genetics》的研究表明,仅利用短片段比例(如100-150bp区间占比)这一单一指标,无需构建预测模型,即可显著区分早晚期癌症患者与健康人。Mouliere F等人(Mouliere et al., 2018)在《Science Translational Medicine》进一步拓展了片段长度的应用边界,指出超短片段(<100bp)和超长片段(>250bp)在癌症患者血浆中存在富集现象,纯比例分析即可大幅提升ctDNA的检测敏感性。

    在末端基序的应用方面,Jiang P等人(Jiang et al., 2020)在《Cancer Discovery》发表研究,系统性地建立了血浆DNA末端基序图谱,证明该特征可作为一种片段组学标志物(Fragmentomic Marker),在癌症、妊娠及器官移植等多种生理与病理状态中展现出显著的区分能力。

    这些研究确立了cfDNA片段组学各单一特征的独立价值与生物学可解释性。

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

    图2 cfDNA片段组学的临床应用

     

    随着领域的不断成熟,近年来的研究趋势逐渐从单一特征验证迈向多维特征整合。2019年,Cristiano S等人(Cristiano et al., 2019)在《Nature》提出DELFI(DNA Evaluation of Fragments for Early Interception)方法,基于低深度WGS系统性地提取全基因组片段化谱,在七种癌症类型中实现了高灵敏度的早期检测。

    2021年,卢煜明(Dennis Lo)团队在《Science》发表重要综述(Lo et al., 2021),将片段长度、末端基序、核小体足迹等多维片段组学特征与表观遗传信息进行系统整合,正式将这一研究方向定义为cfDNA片段组学(cfDNA Fragmentomics),使其上升为与基因组学(Genomics)、表观基因组学(Epigenomics)并列的独立组学层次,表明cfDNA片段组学具有广阔的研究和临床应用价值。

    紧跟科研热点,云序生物倾力打造cfDNA片段组学测序前沿平台。服务聚焦于片段长度、末端基序及核小体印记等核心研究维度,精准捕捉cfDNA的“分子指纹”。我们不仅提供深度数据挖掘,更旨在赋能临床转化,助力片段组学从实验室研究走向精准诊疗的广阔舞台。

     

     

    技术优势

    1.无创可重复采样,超低样本起始量,显著降低检测门槛

    仅需低至5 ng cfDNA即可稳定获得全基因组片段化谱,大幅减少样本依赖测序成本,尤其适合早期肿瘤、微量采血、动态监测及大规模人群筛查场景。

    2.无需富集,直接实现无偏全基因组位置特异性分析

    通过标准双端测序精确测定片段长度,在基因组窗口内统计短/长片段比例与分布,即可捕获位置特异性异常。不依赖基因panel或抗体富集,对低丰度肿瘤来源cfDNA仍保持高灵敏度。

    3.天然反映核小体定位与染色质结构,无需额外表观实验

    健康cfDNA片段化模式高度吻合核小体保护位点与染色质开闭状态;疾病状态下则呈现全基因组紊乱。直接从游离DNA片段长度与末端分布读取染色质可及性信息,省去了传统 ChIP 或核小体测序的繁琐步骤。

     

    技术原理

    cfDNA片段组学通过对血浆cfDNA进行全基因组测序(WGS),在不进行任何靶向捕获或化学修饰处理的前提下,直接从测序数据中提取多维物理特征信息。

    实验流程如下:

    cfDNA提取和质控:利用Genseq® 游离核酸试剂盒提取cfDNA,并使用Bioanalyzer 2100评估质量。

    cfDNA变性及单链化:将质控合格的cfDNA与单链化缓冲液混合进行温和变性,使双链cfDNA解链形成单链DNA(ssDNA)。

    接头连接:在单链DNA连接酶及缓冲体系中,接头通过末端保留方式连接至ssDNA原生末端,不引入额外的末端填补或加 A 尾步骤,从而保留 cfDNA 原始断裂特征。

    双链文库中间体形成:为获得可扩增的双链文库,以连接产物为模板,使用与接头及 cfDNA 末端互补的引物进行温和引物延伸反应。

    低循环PCR 扩增:采用高保真DNA聚合酶对文库中间体进行低循环数PCR扩增,以引入完整测序接头并放大文库信号。

    纯化与测序:PCR 产物经磁珠纯化去除引物二聚体及游离接头,使用 Qubit 对文库浓度与片段大小进行质控。质控合格后进行双端测序。

     

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    案例一:多维cfDNA片段组学检测早期肺癌

    原文:Multidimensional Cell-Free DNA Fragmentomic Assay for Detection of Early-Stage Lung Cancer

    发表时间:2023年5月1日

    发表期刊:American Journal of Respiratory And Critical Care Medicine

    影响因子:21.7

    发表单位:南京医科大学附属肿瘤医院

    肺癌是全球第二常见的癌症类型,也是癌症相关死亡的主要原因。早期局限期与晚期远处转移期肺癌患者的生存率存在显著差异,这凸显了早期诊断对预后判断的重要性。基于液体活检的cfDNA片段组学分析技术近期为疾病检测开辟了新途径。 此研究纳入350名健康对照和432名肺癌患者,对血浆cfDNA进行全基因组测序,在训练队列中比较多种特征和算法组合,最终构建了一个堆叠集成模型。该模型整合了5种cfDNA片段组学特征和5种机器学习算法,实现了对早期肺癌的高灵敏度检测,有望推动临床早期诊断并惠及更多患者。

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

    图1. 基于cfDNA片段组学的模型构建与癌症概率评分确定的示意图

  • 数据分析(仅供展示  详见demo报告)

     一.分析项目

    1. 原始数据整理,Q30质控

    2. 去接头处理和序列统计

    3. 序列匹配与数据统计

    4. 基因组比对

    5. 拷贝数改变(CNA)分析

    6. ctDNA肿瘤分数分析

    7. 片段大小比(FSR)

    8. 片段大小分布(FSD)

    9. 末端motif(EDM)分析

    10. 断点motif(BPM)分析

    11. 核小体足迹分析

     

    二.部分数据分析结果示例

    1.片段大小比(Fragment Size Ratio,FSR)

    FSR将短片段、中间片段和长片段分别定义为65-150bp、151-220bp和221-400bp,用于评估不同长度cfDNA片段之间的相对比例,反映cfDNA整体片段化程度。由于肿瘤来源cfDNA通常表现出更高比例的短片段,FSR能够敏感捕捉肿瘤相关的片段长度偏移,是反映cfDNA片段化特征的重要指标之一。

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

    2.拷贝数改变(CNA)分析

    肿瘤细胞在发生和进展过程中,常伴随染色体扩增、缺失、非整倍体及其他结构性基因组异常,释放到血浆中的cfDNA会携带这些基因组拷贝数特征。基于cfDNA片段组学测序,可通过全基因组覆盖度归一化分析构建血浆DNA拷贝数谱。连续的覆盖度升高或降低分别对应染色体区域的拷贝数增益或缺失,从而评估肿瘤相关的染色体不稳定性、大片段CNV及样本间基因组差异。

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

    3.末端motif(EDM)分析

    EDM分析cfDNA片段5'末端四个碱基的序列组成。由于不同核酸酶活性、染色质可及性及细胞死亡方式会产生特征性的切割模式,EDM能够揭示cfDNA形成机制及组织来源差异,是近年来cfDNA片段组学研究的重要特征。

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

    4. 核小体足迹分析

    cfDNA核小体足迹分析基于cfDNA片段保留的核小体定位特征,解析全基因组染色质开放状态和基因调控模式,能够推断组织来源、评估转录活性,并为肿瘤早期筛查、组织溯源及疾病动态监测提供高分辨率的表观遗传学信息。

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

      

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

     

  • 样本要求:

    推荐样品量: 血浆≥5 mL

    样品运输与保存:

    (1)样品采集:

    建议使用 EDTA 抗凝采血管(紫帽管)或专用 Cell-free DNA Stabilization Tube(如 Streck 管)采集全血,不推荐使用肝素抗凝管(绿帽管)。采血后应尽快离心分离血浆(或按 Streck 管推荐条件处理)。

    (2)样品运输:

    将分离后的血浆分装至无 RNA/DNA 酶污染的冻存管中,密封(可使用封口膜),全程干冰运输。

    (3)样品保存:

    血清或血浆建议分装保存,避免反复冻融。短期保存于-80 ℃ 冰箱;如需长期保存,建议置于液氮中保存。

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