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  • DRIPc-Seq技术

     

     

     

    技术简介:

     

    SLAM-seq(thiol(SH)-linked Alkylation for the Metabolic sequencing of RNA)可以理解为

    细胞中存在一类被称作R-loop的特殊三链核酸结构,由DNA-RNA杂交体和相关的非模板单链DNA组成。哺乳动物细胞中约有5%的区域会形成R-loop,多数集中在转录起始区和转录终止区,由RNA Pol I,II与III转录的RNA均可与DNA形成R-loop,表明其可来源于几乎所有类型的RNA。R-loop可以在细菌到人类等生物体细胞内频繁的形成,进而影响转录并导致基因组的不稳定性,异常R-loop的形成和积累与许多疾病的发生发展具有密切关系,解析R-loop的分布和调控基因表达的机制十分重要。

    DRIPc-seq可以应用于任何细胞类型,只要可以收集足够的起始材料,都可以准确绘制R-loop在各种细胞系和不同条件下的分布。在全基因组范围内提供可重复的、高分辨率的、链特异性的R-loop图谱。

     

    实验原理

    DRIPc-seq是一种高分辨率和链特异性的方法,可以精确地绘制全基因组的R环。简单地说,经过温和的DNA提取和限制性内切酶酶切片段化后,用S9.6抗体对R环结构进行免疫沉淀实验(该抗体对RNA-DNA杂交物显示出亚纳摩尔亲和力,对双链DNA几乎没有亲和力)。杂交体的RNA链通过DNase I处理释放,并用dUTP进行逆转录合成第二条链。随后用尿嘧啶- N -糖基酶(UNG)处理,确保了文库仅由一条链构建。然后在满足质量控制后对cDNA进行扩增和测序。

    图片1副本

    DRIPc-seq流程图

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  • 案例分析

     

    案例

     

    原文:High-resolution, strand-specific R-loop mapping via S9.6-based DNA–RNA immunoprecipitation and high-throughput sequencing

    期刊:NATURE PROTOCOLS            响因子:14.8   

                    

    通过DRIP-seq和DRIPc-seq进行R环定位,能够测量任何感兴趣的基因组中r环结构的稳态分布。更重要的是,这些方法可用于由遗传扰动(基因敲除或敲低)或化学处理(药物,激素)引起的R环分布或动力学的全局变化。已发表的例子包括人乳腺癌细胞对雌激素转录诱导的反应或沉默人HEK293细胞中DNA拓扑异构酶1的后果。利用DRIPc-seq在小鼠细胞和酵母中成功地检测到了R-loop谱。

  • 云序技术优势:

     

    灵敏度高:能够得到全基因组范围内的R-loop图谱

    特异性好:背景噪音低,所需测序深度少

    链特异性:采用链特异性建库,保留链的信息

    实验重复性好:实验重复结果一致性好

     

     

     

     

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